Antagonismo de cepas nativas e estrangeiras de Trichoderma spp. contra Colletotrichum gloeosporioides, que causa antracnose em maracujá
DOI:
https://doi.org/10.57201/ieuna2423323Palavras-chave:
controle biológico, cultivo duplo, competição, antibioseResumo
A antracnose causada por Colletotrichum gloeosporioides provoca desfolha, aborto de flores, lesões nos frutos e reduz a produção e a qualidade do maracujá. Embora seja controlada com fungicidas químicos, esses produtos poluem o meio ambiente e são perigosos para a saúde, por isso aumentaram as pesquisas sobre o controle biológico com Trichoderma spp. Os objetivos da pesquisa foram isolar, identificar, determinar a patogenicidade do agente causal da antracnose e avaliar o antagonismo contra cepas nativas mexicanas: T. asperellum (TaCh e TaST), Trichoderma sp. (TsRV, TsCo, TsCh e TsLF); além disso, contra espécies estrangeiras: Trichoderma virens G-41®, T. harzianum T-22®, Trichoderma sp. (Bactiva®) e Trichoderma sp. (Fithan®), usando a técnica de cultura dupla. Os seguintes foram avaliados: o dia do primeiro contato hifal, o antagonismo e a porcentagem de esporulação e inibição de Trichoderma spp. contra o fungo patogênico. O C. gloeosporioides foi isolado e identificado a partir de maracujá infectado, o que causou infecção em frutos saudáveis 10 dias após a inoculação do isolado fúngico. O Trichoderma e o patógeno entraram em contato entre 1,6 (TsLF) e 3,8 (TaST) dias. Todas as cepas testadas, exceto TsLF e Bactiva®, apresentaram entre 97,56% e 100% de esporulação. TsRV, TsCh, Fithan®, TaCh, G-41® e T-22® cresceram mais que o patógeno e cobriram toda a superfície do PDA (antagonismo 1). TsRV, Bactiva®, Fithan® e TaChin inibiram 88,1, 76,0, 73,5 e 72,8 % do crescimento micelial de C. gloeosporioides e são considerados candidatos para o manejo integrado da antracnose em maracujá.
Downloads
Referências
Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology (5th ed.). Elsevier Academic Press.
Bell, D. K., Wells, H. D. y Markham, C. R. (1982). In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogen. Phytopathology, 72, 379-382. https://doi.org/10.1094/Phyto-72-379
Cleves, A., Jarma, A. de J,. y Fonseca, J. (2009). Manejo integrado del cultivo de maracuyá. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitskiy, F. Casierra, W. Piedrahíta y Flórez, L. E. (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 97- 157). Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.
Campo, A. R., Escobar-López, F., y Segura-Cepeda, L. (2015). Patogenicidad de cepas de Colletotrichum gloeosporioides aisladas en distintos órganos de la planta de maracuyá amarillo (Pasiflora edulis F. flavicara O. Deg). Fitopatología Colombiana, 39 (2), 41-44. https://www.researchgate.net/publication/309735681
De la Cruz-Quiroz, R., Roussos, S., Rodríguez-Herrera, R., Hernandez-Castillo, D., & Aguilar, C. N. (2018). Growth inhibition of Colletotrichum gloeosporioides and Phytophthora capsici by native Mexican Trichoderma strains. Karbala International Journal of Modern Science, 4(2), 237-243. https://doi.org/10.1016/j.kijoms.2018.03.002
De los Santos-Villalobos, S., Guzmán-Ortiz, D. A., Gómez, M. L., Délano-Frier, J. P., de Folter, S., Sanchez-Garcia, P., & Peña-Cabriales, J. J. (2013). Potential use of Trichoderma asperellum (Samuels, Liechfeldt et Nirenberg) T8a as a biological control agent against anthracnose in mango (Mangifera indica L.). Biological Control, 64(1), 37-44. http://dx.doi.org/10.1016/j.biocontrol.2012.10.006
Hauser, J. T. (2006). Techniques for studying bacteria and fungi. Carolina Biological Supply Company. https://www.fishersci.com/content/dam/fishersci/en_US/documents/programs/education/brochures-and-catalogs/brochures/carolina-biological-techniques-studying-bacteria-fungi-brochure.pdf.
Landero-Valenzuela, N., Nieto-Angel, D., Téliz-Ortiz, D., Alatorre-Rosas, R., Ortíz-García, C.F., & Orozc-Santos, M. (2015). Biological control of anthracnose by postharvest application of Trichoderma spp. on maradol papaya fruit. Biological Control, 91, 88-93. http://dx.doi.org/10.1016/j.biocontrol.2015.08.002
Maheshwari, N. U., y Vidhya, K. (2016) Antagonistic effect of Trichoderma species against various fruit pathogens. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, 36(I), 1–9. http://www.globalresearchonline.net/
Michel, A., Reyes, A., Otero, M., Rebolledo, O., & Lezama, R. (2005). Potencial Antagónico de Trichoderma spp. sobre Fusarium oxysporum Schlechtend.:Fr. f. sp. lycopersici (Sacc.) Snyder y Hansen y Sclerotium rolfsii (Sacc.) in vitro e invernadero. Revista Mexicana de Fitopatología, 23, 284-291.
Michel-Aceves, A. C., Hernández-Morales, J., Toledo-Aguilar, R., Sabino López, J. E., &Romero-Rosales, T. (2019). Capacidad antagónica de Trichoderma spp. nativa contra Phytophthora parasitica y Fusarium oxysporum aislados de cultivos de Jamaica. Revista Fitotecnia Mexicana, 42 (3), 235-241.http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802019000300235&lng=es&tlng=es
Patil, N. N., Waghmo, de M. S., Gaikwad, P. S., Gajbhiye, M. H., Gunjal, A. B., Nowan, N., & Kapadnis, B. P. (2014). Potential of Microbispora sp. v2 as biocontrol of southern blight of Zea mays L. (Baby corn) in vitro studies. Indian Journal of Experimental Biology, 52(1), 1147-1151.
Ríos Velasco, C., Caro Cisneros, J.M., Berlanga Reyes, D.I., Ruiz Cisneros, M.F., Ornelas Paz, J.J., Salas Marina, M.Á., & Guerrero Prieto, V.M. (2016). Identificación y actividad antagónica in vitro de aislados de Bacillus spp. y Trichoderma spp. contra hongos fitopatógenos comunes. Revista Mexicana de Fitopatología, 34(1), 85-99.
Rodríguez-García, D., y Wang-Wong, A. (2020). Efectividad a nivel in vitro de Trichoderma spp. nativos e importados contra Fusarium oxysporum. Agronomía Costarricense, 44(2), 109-125. https://doi.org/10.15517/RAC.V44I2.43096
Sanmartín, N. P., López. X., Pemberthy, M. P., Granada, S. D., y Rueda, L. E. A. (2012). Análisis del modo de acción y de la capacidad antagónica de Trichoderma asperellum sobre Colletotrichum gloesporioide y Fusarium sp. Revista Tumbaga 2(7), 29-49. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=4550287
SAS (2015). SAS user's guide: Statistics. Relase 6.03. Ed. SAS Institute incorporation, Cary, N.C. USA.
Siddiqui, Y., & Ali, A. (2014). Colletotrichum gloeosporioides (Anthracnose). In S. Bautista-Baños. (Ed.), Postharvest decay. Control strategies. Chapter 11 (337-371). Academic Press. Elsevier Inc. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-12-411552-1.00011-9
Stoppacher, N., Kluger, B., Zeilinger, S., Krsk, R., y Schuhmacher R. (2010). Identification and profiling of volatile metabolites of the biocontrol fungus Trichodermaatroviride by HS-SPME-GC-MS. Journal of Microbiological Methods, 817-193. http://dx.doi.org/10.1016/j.mimet.2010.03.011
Weir, B. S., Johnston, P. R., & Damm, U. (2012). The Colletotrichum gloeosporioides species complex. Studies in Mycology, 73(1), 115–180. https://doi.org/10.3114/sim0011
White, T.J., Bruns, T., Lee, S., y Taylor, J. (1990). Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenies. In M.A. Inns, D.H. Gelfland, J.J. Sninsky, and T. J. White (eds.), PCR Protocols (pp. 315-322). Academic Press.
Wu, J., Hu, S., Ye, B., Hu, X., Xiao, W., Yu, H. y Zhang, C. (2022). Diversity and Resistance to Thiophanate-Methyl of Colletotrichum spp. in Strawberry Nursery and the Development of Rapid Detection Using LAMP Method. Agronomy 12(11), 2815. https://doi.org/10.3390/agronomy12112815
Yan, X., Li, H. y Su, X. (2018). Review of optical sensors for pesticides. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 103, 1–20. https://doi.org/10.1016/j.trac.2018.03.00410.1016/j.trac.2018.03.004
Downloads
Publicado
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2024 José Francisco Díaz Nájera; Sergio Ayvar-Serna, Edna F. Valdez-Hernández, Edgar Jesús Delgado-Núñez, Antonio Mena-Bahena (Autor/a)

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.














