Antagonismo de cepas nativas y foráneas de Trichoderma spp., contra Colletotrichum gloeosporioides causante de antracnosis en maracuyá
DOI:
https://doi.org/10.57201/ieuna2423323Palabras clave:
control biológico, cultivo dual, competencia, antibiosisResumen
La antracnosis causada por Colletotrichum gloeosporioides provoca defoliación, aborto de flores, lesiones en frutos y reduce la producción y calidad de maracuyá. Aunque es controlada con fungicidas químicos, éstos contaminan el medio ambiente y son peligrosos para la salud, por lo que se ha incrementado la investigación en el control biológico con Trichoderma spp. Los objetivos de la investigación fueron aislar, identificar, determinar la patogenicidad del agente causal de la antracnosis y evaluar el antagonismo frente a cepas nativas mexicanas: T. asperellum (TaCh y TaST), Trichoderma sp. (TsRV, TsCo, TsCh y TsLF); además, frente a especies foráneas: Trichoderma virens G-41®, T. harzianum T-22®, Trichoderma sp. (Bactiva®) y Trichoderma sp. (Fithan®), mediante la técnica de cultivo dual. Se evaluaron: el día del primer contacto entre hifas, el antagonismo y el porcentaje de esporulación e inhibición de Trichoderma spp., contra el hongo patógeno. De frutos de maracuyá infectados se aisló e identificó C. gloeosporioides, el cual provocó infección en los frutos sanos a los 10 días después de la inoculación del aislado fungoso. Trichoderma y el patógeno hicieron contacto entre 1,6 (TsLF) y 3,8 (TaST) días. Todas las cepas evaluadas excepto TsLF y Bactiva®, presentaron entre 97,56 y 100 % de esporulación. TsRV, TsCh, Fithan®, TaCh, G-41® y T-22® sobrecrecieron al patógeno y cubrieron toda la superficie del PDA (antagonismo 1). Asimismo, TsRV, Bactiva®, Fithan® y TaChinhibieron 88,1; 76,0; 73,5 y 72,8 % el crecimiento miceliar de C. gloeosporioidesy se consideran candidatas para el manejo integrado de la antracnosis en maracuyá.
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Citas
Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology (5th ed.). Elsevier Academic Press.
Bell, D. K., Wells, H. D. y Markham, C. R. (1982). In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogen. Phytopathology, 72, 379-382. https://doi.org/10.1094/Phyto-72-379
Cleves, A., Jarma, A. de J,. y Fonseca, J. (2009). Manejo integrado del cultivo de maracuyá. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitskiy, F. Casierra, W. Piedrahíta y Flórez, L. E. (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 97- 157). Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.
Campo, A. R., Escobar-López, F., y Segura-Cepeda, L. (2015). Patogenicidad de cepas de Colletotrichum gloeosporioides aisladas en distintos órganos de la planta de maracuyá amarillo (Pasiflora edulis F. flavicara O. Deg). Fitopatología Colombiana, 39 (2), 41-44. https://www.researchgate.net/publication/309735681
De la Cruz-Quiroz, R., Roussos, S., Rodríguez-Herrera, R., Hernandez-Castillo, D., & Aguilar, C. N. (2018). Growth inhibition of Colletotrichum gloeosporioides and Phytophthora capsici by native Mexican Trichoderma strains. Karbala International Journal of Modern Science, 4(2), 237-243. https://doi.org/10.1016/j.kijoms.2018.03.002
De los Santos-Villalobos, S., Guzmán-Ortiz, D. A., Gómez, M. L., Délano-Frier, J. P., de Folter, S., Sanchez-Garcia, P., & Peña-Cabriales, J. J. (2013). Potential use of Trichoderma asperellum (Samuels, Liechfeldt et Nirenberg) T8a as a biological control agent against anthracnose in mango (Mangifera indica L.). Biological Control, 64(1), 37-44. http://dx.doi.org/10.1016/j.biocontrol.2012.10.006
Hauser, J. T. (2006). Techniques for studying bacteria and fungi. Carolina Biological Supply Company. https://www.fishersci.com/content/dam/fishersci/en_US/documents/programs/education/brochures-and-catalogs/brochures/carolina-biological-techniques-studying-bacteria-fungi-brochure.pdf.
Landero-Valenzuela, N., Nieto-Angel, D., Téliz-Ortiz, D., Alatorre-Rosas, R., Ortíz-García, C.F., & Orozc-Santos, M. (2015). Biological control of anthracnose by postharvest application of Trichoderma spp. on maradol papaya fruit. Biological Control, 91, 88-93. http://dx.doi.org/10.1016/j.biocontrol.2015.08.002
Maheshwari, N. U., y Vidhya, K. (2016) Antagonistic effect of Trichoderma species against various fruit pathogens. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, 36(I), 1–9. http://www.globalresearchonline.net/
Michel, A., Reyes, A., Otero, M., Rebolledo, O., & Lezama, R. (2005). Potencial Antagónico de Trichoderma spp. sobre Fusarium oxysporum Schlechtend.:Fr. f. sp. lycopersici (Sacc.) Snyder y Hansen y Sclerotium rolfsii (Sacc.) in vitro e invernadero. Revista Mexicana de Fitopatología, 23, 284-291.
Michel-Aceves, A. C., Hernández-Morales, J., Toledo-Aguilar, R., Sabino López, J. E., &Romero-Rosales, T. (2019). Capacidad antagónica de Trichoderma spp. nativa contra Phytophthora parasitica y Fusarium oxysporum aislados de cultivos de Jamaica. Revista Fitotecnia Mexicana, 42 (3), 235-241.http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802019000300235&lng=es&tlng=es
Patil, N. N., Waghmo, de M. S., Gaikwad, P. S., Gajbhiye, M. H., Gunjal, A. B., Nowan, N., & Kapadnis, B. P. (2014). Potential of Microbispora sp. v2 as biocontrol of southern blight of Zea mays L. (Baby corn) in vitro studies. Indian Journal of Experimental Biology, 52(1), 1147-1151.
Ríos Velasco, C., Caro Cisneros, J.M., Berlanga Reyes, D.I., Ruiz Cisneros, M.F., Ornelas Paz, J.J., Salas Marina, M.Á., & Guerrero Prieto, V.M. (2016). Identificación y actividad antagónica in vitro de aislados de Bacillus spp. y Trichoderma spp. contra hongos fitopatógenos comunes. Revista Mexicana de Fitopatología, 34(1), 85-99.
Rodríguez-García, D., y Wang-Wong, A. (2020). Efectividad a nivel in vitro de Trichoderma spp. nativos e importados contra Fusarium oxysporum. Agronomía Costarricense, 44(2), 109-125. https://doi.org/10.15517/RAC.V44I2.43096
Sanmartín, N. P., López. X., Pemberthy, M. P., Granada, S. D., y Rueda, L. E. A. (2012). Análisis del modo de acción y de la capacidad antagónica de Trichoderma asperellum sobre Colletotrichum gloesporioide y Fusarium sp. Revista Tumbaga 2(7), 29-49. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=4550287
SAS (2015). SAS user's guide: Statistics. Relase 6.03. Ed. SAS Institute incorporation, Cary, N.C. USA.
Siddiqui, Y., & Ali, A. (2014). Colletotrichum gloeosporioides (Anthracnose). In S. Bautista-Baños. (Ed.), Postharvest decay. Control strategies. Chapter 11 (337-371). Academic Press. Elsevier Inc. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-12-411552-1.00011-9
Stoppacher, N., Kluger, B., Zeilinger, S., Krsk, R., y Schuhmacher R. (2010). Identification and profiling of volatile metabolites of the biocontrol fungus Trichodermaatroviride by HS-SPME-GC-MS. Journal of Microbiological Methods, 817-193. http://dx.doi.org/10.1016/j.mimet.2010.03.011
Weir, B. S., Johnston, P. R., & Damm, U. (2012). The Colletotrichum gloeosporioides species complex. Studies in Mycology, 73(1), 115–180. https://doi.org/10.3114/sim0011
White, T.J., Bruns, T., Lee, S., y Taylor, J. (1990). Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenies. In M.A. Inns, D.H. Gelfland, J.J. Sninsky, and T. J. White (eds.), PCR Protocols (pp. 315-322). Academic Press.
Wu, J., Hu, S., Ye, B., Hu, X., Xiao, W., Yu, H. y Zhang, C. (2022). Diversity and Resistance to Thiophanate-Methyl of Colletotrichum spp. in Strawberry Nursery and the Development of Rapid Detection Using LAMP Method. Agronomy 12(11), 2815. https://doi.org/10.3390/agronomy12112815
Yan, X., Li, H. y Su, X. (2018). Review of optical sensors for pesticides. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 103, 1–20. https://doi.org/10.1016/j.trac.2018.03.00410.1016/j.trac.2018.03.004
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