Sensibilidad y especificidad del método inmunocromatográfico utilizado para el diagnóstico de rotavirus

Authors

  • N Fariña Universidad Nacional de Asunción, Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud. Departamento de Análisis Clínicos y Microbiología. Asunción, Paraguay, Laboratorio San Roque, Asunción-Paraguay
  • ME Galeano Universidad Nacional de Asunción, Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud, Departamento de Biología Molecular. San Lorenzo, Paraguay
  • M Martínez Universidad Nacional de Asunción, Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud, Departamento de Biología Molecular. San Lorenzo, Paraguay
  • R Ferreira Laboratorio San Roque, Asunción-Paraguay
  • M Vega Laboratorio San Roque, Asunción-Paraguay
  • E Espínola Universidad Nacional de Asunción, Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud, Departamento de Biología Molecular. San Lorenzo, Paraguay.
  • G Parra Laboratorio San Roque, Asunción-Paraguay
  • L Figueredo Laboratorio San Roque, Asunción-Paraguay
  • G Russomando Universidad Nacional de Asunción, Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud, Departamento de Biología Molecular. San Lorenzo, Paraguay

Keywords:

rotavirus, inmunocromatografía, sensibilidad, especificidad

Abstract

El rotavirus (RV) es el principal agente viral causante de diarrea aguda en niños menores de 5 años y es responsable de aproximadamente el 6% de las muertes en este grupo etáreo, lo que conlleva la necesidad de utilizar métodos de diagnósticos rápidos y confiables. El objetivo del estudio es evaluar la sensibilidad y especificidad del método inmunocromatográfico (ICG), en el que se basan muchos kits comerciales utilizados para el diagnóstico de rotavirus grupo A, tomando como referencia el método de electroforesis en gel de poliacrilamida (PAGE). Se seleccionaron muestras de heces de 317 pacientes con diarrea aguda que concurrieron a un laboratorio privado de mayo a noviembre del 2006, con pedido de análisis de rotavirus y todos los datos de los pacientes fueron manejados de manera confidencial Se utilizaron kits de las marcas comerciales Operón simple (n=154) o SD Bioline rotavirus (n=163), siguiendo estrictamente las instrucciones del fabricante. Las muestras fueron conservadas en frío y remitidas al IICS para la realización de los estudios moleculares. La sensibilidad obtenida por el método ICG fue de 97,8% y la especificidad de 84%. La concordancia absoluta fue del 90%. Las muestras que dieron resultados discrepantes entre ICG y PAGE, fueron confirmadas por nRT-PCR, resultados que coincidieron con los obtenidos por PAGE. La sensibilidad del método ICG es muy buena, si bien la especificidad es moderada el método puede ser utilizado como screening para el diagnóstico rápido de rotavirus y sería aconsejable utilizar métodos más específicos como los moleculares para estudios epidemiológicos.

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Parashar UD, Hummelman EG, Bresee JS, Miller MA, Glass RI. Global illness and deaths caused by rotavirus disease in children. Emerg Infect Dis 2003; 9: 565-72.

Organization WH. Rotavirus vaccines. Weekly epidemiological record 2007; 32(82):285-96.

Estes ME Rotaviruses and their replication. 4th ed. Fields Virology, ed. L.W. Wilkinson. 2001, Philadelphia. 1747-87.

Fischer T.K, Gentsch JR. Rotavirus typing methods and algorithms. Rev Med Virol 2004; 14(2):71-82.

Prasad BV. Structural studies on gastroenteritis viruses. Novartis Found Symp 2001;238: 26-37

Kane EM. The epidemiology of rotavirus diarrhea in Latin America. Anticipating rotavirus vaccines. Rev Panam Salud Publica 2004; 16(6):371-7.

Dormitzer PR. Rotavirus Enfermedades infecciosas. Mandell GL, Bennett JE, Dolin R., Ed. 2006.

Ferreira TL, Becho MC, Bernardo AR, Branco Chavez TC, Ribeiro RS, Lima de JS et al. Performance of a latex agglutination test in the diagnosis of acute gastroenteritis by rotavirus. Brazilian Journal of Microbiology. 2006;37:587-9.

Eing BR, May G, Baumeister HG, Kuhn JE. Evaluation of Two Enzyme Immunoassays for Detection of Human Rotaviruses in Fecal Specimens. J. Clin. Microbiol.2001; 39(12) 4532-34.

Rivera M, Vial P, Potin M, Parado P, Amarales P, Ryan M et al. Evaluación de cuatro métodos para detección de rotavirus en deposiciones en niños chilenos. Rev. Chil. Pediatr. 1995; 66(3); 150-5.

Wilhelmi I, Colomina J,Martín-Rodrigo D, Roman E, Sánchez-Fauquier A. New immunochromatographic method for rapid detection of rotaviruses in stool samples compared with standard enzyme immunoassay and latex agglutination techniques. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2001;20(10):741-3.

Lee SY, Hong JH, Lee SW, Lee M. Comparisons of Latex Agglutination, Immunochromatography and Enzyme Immunoassay Methods for the Detection of Rotavirus Antigen. Korean J Lab Med 2007;27:437-41.

Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of bacteriophage T4. Nature 1970;227:680-5.

Sanguinetti CJ, Dias Neo E, Simpson AJ. Rapid silver staining and recovery of PCR products separated on polyacrilamida gels. Biotecniques 1994;17, 914-21.

Gouvea V, Glass RI, Woods P. Polymerase chain reaction amplification and typing of rotavirus nucleicacid from stool specimens. J Clin Microbiol 1990; 28(2): 276-82.

Gentsch JR, Glass RI, Woods P. Identification of group A rotavirus gene 4 types by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol 1992; 30(6): 1365-73.

Hulley SC Diseño de un nuevo estudio: III. Pruebas diagnósticas. Edición española Diseño de la Investigación Clínica, ed. Doyma. 1993, Barcelona.

Gómez JA. Anticipating rotavirus vaccines: review of epidemiologic studies of rotavirus diarrhea in Argentina. Rev Panam Salud Publica, 1998. 3(2): 69-78.

Candia N, Parra GI, Chirico M, Velázquez G, Fariña N, Laspina F. Acute diarrhea in Paraguayan children population: detection of rotavirus electropherotypes. Acta Virol, 2003. 47; 137-40.

Parra GI, Martínez M, Amarilla A, Zunini M, Achucarro C, Martínez V et al. Incidence of rotaviral infection in Central and East Paraguay between 2002 and 2003: a single electropherotype detected. Virus Reviews and Research 2004; 9(1):73-6.

Amarilla A, Espínola E, Galeano ME, Fariña N, Russomando G, Parra GI., Rotavirus infection in the Paraguayan population from 2004 to 2005:high incidence of rotavirus strains with short electropherotype in children and adults. Med Sci Monit 2007; 13(7): 333-7.

Parra GI, Espínola E, Amarilla A, Stupka J, Martinez M, Zunini M et al. Diversity of group A rotavirus strains circulating in Paraguay from 2002 to 2005: detection of an atypical G1 in South America. J Clin Virol 2007; 40(2): 135-41.

Hammami S, Castro AE, Osbum BI. Comparison of polyacrylamide gel electrophoresis, an enzyme-linked-inmunosorbent assay, and an agglutination test for the direct identification of bovine rotavirus from feces and coelectrophoresis of viral RNA's. J Vet Diagn Invest 1990; 2:184-90.

Published

2008-12-01

How to Cite

Fariña, N., Galeano, M., Martínez, M., Ferreira, R., Vega, M., Espínola, E., … Russomando, G. (2008). Sensibilidad y especificidad del método inmunocromatográfico utilizado para el diagnóstico de rotavirus. Memorias Del Instituto De Investigaciones En Ciencias De La Salud, 6(2), 5–10. Retrieved from https://revistascientificas.una.py/index.php/RIIC/article/view/2825

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