Cuantificación de inóculo de Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid en parcelas de soja del Departamento de Itapúa-Paraguay

Autores/as

  • Marco Maidana-Ojeda Centro de Desarrollo e Innovación Tecnológica (CEDIT). Hohenau, Itapúa, Paraguay. https://orcid.org/0000-0002-1578-7454
  • Julio César Sosa-Gerke Universidad Católica “Nuestra Señora De La Asunción” Campus Universitario De Itapúa, Unidad Pedagógica María Auxiliadora, Tomás Romero Pereira. Itapúa, Paraguay
  • Claudia Elizabeth Bogado-González Universidad Católica “Nuestra Señora De La Asunción” Campus Universitario de Itapúa. Unidad Pedagógica María Auxiliadora, Tomás Romero Pereira. Itapúa, Paraguay
  • Marta Alicia Fernández-Gamarra Centro de Investigación Capitán Miranda. Instituto Paraguayo de Tecnología Agraria. Itapúa, Paraguay
  • Andrés Dejesús Sanabria-Velázquez Centro de Desarrollo e Innovación Tecnológica (CEDIT). Hohenau, Itapúa, Paraguay. https://orcid.org/0000-0002-8694-3725
  • Horacio Daniel López-Nicora Universidad San Carlos. Departamento de Producción Agrícola. Asunción, C.P. 1884, Paraguay. https://orcid.org/0000-0002-9672-9589
  • Guillermo Andrés Enciso-Maldonado Centro de Desarrollo e Innovación Tecnológica (CEDIT). Hohenau, Itapúa, Paraguay. https://orcid.org/0000-0002-9528-7627

DOI:

https://doi.org/10.47133/IEUNA2027

Palabras clave:

pudrición carbonosa del tallo, Glycine max, patógeno de suelo, rotación de cultivos

Resumen

La densidad de microesclerocios del fitopatógeno Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. viables en el suelo está relacionada con la intensidad de la pudrición carbonosa del tallo la cual causa daños significativos en el rendimiento de soja en Paraguay. Durante enero del año 2017 y mayo del 2019 se realizaron muestreos de suelo en parcelas de soja de cinco distritos del Departamento de Itapúa (Edelira, Tomás Romero Pereira, Capitán Meza, Natalio y San Rafael), durante los estadios fenológicos reproductivos (R1-R7) con el objetivo de cuantificar la cantidad de inóculo de M. phaseolina en suelos con cultivos de soja. En el momento del muestreo se aplicó un cuestionario a los productores sobre la rotación de cultivo previa. Las muestras de suelo fueron procesadas utilizando medio de cultivo Papa-Dextrosa-Agar modificado con Rifamicina y Tergitol. Se detectó la presencia de colonias de M. phaseolina en el 100 % de los puntos muestreados. La densidad de inóculo varió de 7 a 147 unidad formadora de colonias (UFC/g de suelo), con promedio de 51 UFC/g de suelo y mediana de 48 UFC/g de suelo en el año 2017, mientras que en 2019 la densidad de inóculo varió de 6 a 49 UFC/g de suelo, con promedio de 25,07 UFC/g de suelo y una mediana de 23 UFC/g de suelo. Se observó menor densidad de inóculo en parcelas con rotación de cultivo canola-soja-soja con promedios de 30 y 12 UFC/g de suelo. Los resultados de este trabajo de muestreo permiten identificar zonas con elevadas poblaciones iniciales de M. phaseolina para advertir a los productores de dichas zonas y crear un registro de fincas donde establecer futuros experimentos en campos comerciales.

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Citas

Coser, S. M., Chowda Reddy, R. V., Zhang, J., Mueller, D. S., Mengistu, A., Wise, K. A., Allen, T. W.., Singh, A. & Singh, A. K. (2017). Genetic architecture of charcoal rot (Macrophomina phaseolina) resistance in soybean revealed using a diverse panel. Frontiers in plant science, 8, 1626. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.01626.

Cross, C., Wrather, A., Fothergill, K., Shannon, G., Li, S., Shumway, C. & Rupe, J. (2012). Effect of lactofen, azoxystrobin, and genotypes on charcoal rot, Phomopsis seed decay, and pod and stem blight in soybean. Plant Disease, 96(8), 1154-1158. https://doi.org/10.1094/PDIS-09-11-0810-RE.

Gaetán, S. A., Fernandez, L. & Madia, M. (2006). Occurrence of charcoal rot caused by Macrophomina phaseolina on canola in Argentina. Plant Disease, 90(4), 524-524. https://doi.org/10.1094/PD-90-0524A.

Gajera, H. P., Bambharolia, R. P., Patel, S. V., Khatrani, T. J. & Goalkiya, B. A. (2012). Antagonism of Trichoderma spp. against Macrophomina phaseolina: evaluation of coiling and cell wall degrading enzymatic activities. Journal of Plant Pathology & Microbiology. 3(149), 3-7. https://doi.org/10.4172/2157-7471.1000149.

Gupta, G. K., Sharma, S. K. & Ramteke, R. (2012). Biology, epidemiology and management of the pathogenic fungus Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid with special reference to charcoal rot of soybean (Glycine max (L.) Merrill). Journal of Phytopathology, 160(4), 167-180. https://doi.org/10.1111/j.1439-0434.2012.01884.x.

Khangura, R. & Aberra, M. (2009). First report of charcoal rot on canola caused by Macrophomina phaseolina in Western Australia. Plant Disease, 93(6),666-666. https://doi.org/10.1094/PDIS-93-6-0666C.

Kirkegaard, J. A., Wong, P. T. W. & Desmarchelier, J. M. (1996). In vitro suppression of fungal root pathogens of cereals by Brassica tissues. Plant pathology, 45(3), 593-603. https://doi.org/10.1046/j.1365-3059.1996.d01-143.x.

Lodha, S. & Mawar, R., (2020). Population dynamics of Macrophomina phaseolina in relation to disease management: A review. Journal of Phytopathology, 168(1), 1-17. https://doi.org/10.1111/jph.12854.

Mengistu, A., Reddy, K. N., Zablotowicz, R. M. & Wrather, A. J. (2009). Propagule densities of Macrophomina phaseolina in soybean tissue and soil as affected by tillage, cover crop, and herbicide. Plant Health Progress, 10(1), 1-11. https://doi.org/10.1094/PHP-2009-0130-01-RS.

Mengistu, A., Smith, J. R., Ray, J. D. & Bellaloui, N. (2011). Seasonal progress of charcoal rot and its impact on soybean productivity. Plant disease, 95(9), 1159-1166. https://doi.org/10.1094/PDIS-02-11-0100.

Orrego Fuente, A. L., Grabowski, C., Soilan, L., Ferreira, L. & Del Valle, C. (2009). Distribución geográfica de Macrophomina phaseolina en los cultivos de soja, sésamo y maní. In A. L. Orrego-Fuente (Ed.), Macrophomina phaseolina, hongo causante de la pudrición carbonosa del tallo(pp. 27-34). Alamo, SA, FCA, UNA/INBIO.

Reis, E. M., Baruffi, D., Remor, L. & Zanatta, M. (2011). Decomposition of corn and soybean residues under field conditions and their role as inoculum source. Summa phytopathologica, 37(1), 65-67. https://doi.org/10.1590/S0100-54052011000100011.

Reis, E. M., Boaretto, C. & Danelli, A. L. D. (2014). Macrophomina phaseolina: density and longevity of microsclerotia in soybean root tissues and free on the soil, and competitive saprophytic ability. Summa Phytopathologica, 40(2), 128-133. https://doi.org/10.1590/0100-5405/1921.

Romero-Luna, M. P., Mueller, D., Mengistu, A., Singh, A. K., Hartman, G. L. & Wise, K. A. (2017). Advancing our understanding of charcoal rot in soybeans. Journal of Integrated Pest Management, 8(1), 8. https://doi.org/10.1093/jipm/pmw020.

Salas, P. y Sarubbi, H. (2013). Manejo de malezas en el cultivo de soja en el Paraguay. Viabilidad del glifosato en sistemas productivos sustentables. INIA. Serie Técnica No, 131-136. http://www.ainfo.inia.uy/digital/bitstream/item/7633/1/st-204-2013.-p.131-136.pdf.

Smith, B. J., Sarwar, M., Wong, P. T. W. & Kirkegaard, J. A. (1999). Suppression of cereal pathogens by canola root tissues in soil. In P. A. Salisbury, T. D. Potter, G. McDonald & A. G. Green, Proceedings of the 10th International Rapeseed Congress’. Canberra, ACT. http://www.regional.org.au/au/gcirc/2/334.htm.

Smith, D., Chilvers, M., Dorrance, A., T. Hughes, Mueller, D., Niblack, T. & Wise, K. (2014). Charcoal rot management in the north central region. University of Wisconsin Extension Bulletin A4037. https://soybeanresearchinfo.com/pdf_docs/CharcoalRotMgmt_A4037.pdf.

Souchaud, S. (2005). Dinámica de la agricultura de exportación paraguaya y el complejo de la soja: una organización del territorio al estilo brasileño. En: Fogel, R. y Riquelme, M. (16-35). Enclave sojero, merma de soberanía y pobreza. (pp.16-35). CERI, Centro de Estudios Rurales Interdisciplinarios .

Su, G., Suh, S. O., Schneider, R. W. & Russin, J. S. (2001). Host specialization in the charcoal rot fungus, Macrophomina phaseolina. Phytopathology, 91(2), 120-126. https://doi.org/10.1094/PHYTO.2001.91.2.120.

Vale, F. X. R. do, Parlevliet, J. E. & Zambolim, L. (2001). Concepts in plant disease resistance. Fitopatologia Brasileira, 26(3), 577-589. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-41582001000300001.

Wrather, A., Shannon, G., Balardin, R., Carregal, L., Escobar, R., Gupta, G. K., Ma, Z., Morel, W., Ploper, D. & Tenuta, A. (2010). Effect of diseases on soybean yield in the top eight producing countries in 2006. Plant Health Progress, 11(1), 29. https://doi.org/10.1094/PHP-2010-0102-01-RS.

Zveibil, A., Mor, N., Gnayem, N. & Freeman, S. (2012). Survival, host–pathogen interaction, and management of Macrophomina phaseolina on strawberry in Israel. Plant Disease, 96(2), 265-272. https://doi.org/10.1094/PDIS-04-11-0299.

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Publicado

2020-12-22

Cómo citar

Maidana-Ojeda, M., Sosa-Gerke, J. C., Bogado-González, C. E., Fernández-Gamarra, M. A., Sanabria-Velázquez, A. D., López-Nicora, H. D., & Enciso-Maldonado, G. A. (2020). Cuantificación de inóculo de Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid en parcelas de soja del Departamento de Itapúa-Paraguay. Revista Investigaciones Y Estudios - UNA, 11(2), 69–77. https://doi.org/10.47133/IEUNA2027

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