Sensibilidad antimicrobiana de enterobacterias aisladas en infecciones urinarias de pacientes ambulatorios y hospitalizados del Hospital Central del IPS

Myriam Leguizamón; Margarita Samudio; Gustavo Aguilar

Autores/as

Myriam Leguizamón
Margarita Samudio Autor/a
Gustavo Aguilar Autor/a

Palabras clave:

infecciones del tracto urinario, tratamiento antibiótico, Enterobacteria, Paraguay

Resumen

El objetivo de este estudio descriptivo, retrospectivo y transversal fue determinar la sensibilidad a los antimicrobianos de las enterobacterias obtenidas de los cultivos de orina en el Hospital Central del Instituto de Previsión Social (IPS) y comparar la tasa de sensibilidad según la especie y el origen de la muestra. Se realizó la revisión retrospectiva del expediente clínico de pacientes ambulatorios y hospitalizados diagnosticados como infección urinaria que ingresaron en el Hospital Central del IPS entre marzo del 2015 y agosto del 2016. Se incluyeron 4014 aislamientos de enterobacterias de infecciones urinarias, 3224 (80,3%) fueron muestras ambulatorias y 790 (19,7%) de pacientes hospitalizados. El patógeno urinario más frecuente fue Escherichia coli (70,1%) seguido de Klebsiella pneumoniae (18,9%), Enterobacter cloacae (2,8%) y otras especies (8,2%). La sensibilidad de E. coli a fosfomicina, nitrofurantoína y aminoglucósidos fue alta. El 24,4% de E. coli y el 50,3% de K. pneumoniae fueron productores de betalactamasa de espectro extendido (BLEE). E. coli sigue siendo la causa más frecuente de infecciones del tracto urinario. El tratamiento de elección recomendado es fosfomicina, nitrofurantoína o aminoglucósidos, ya que este esquema cubrirá más del 90% de los patógenos que causan infección del tracto urinario en el hospital de IPS. Deben investigarse las enterobacterias que producen infección urinaria atípica.

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Referencias

Echavarría J, Sarmiento E, Osores F. Infección Del tracto urinario y manejo de antibiótico. Acta Med Per 2006; 23(1):26-31.

Hooton TM. Recurrent urinary tract infection in women. Int J Antimicrob Agents 2001; 17:259-268.

Álvarez JC. Infecciones de vías urinarias en el Hospital Universitario del Norte. Salud Uninorte 2007; 23(1):9-18.

Ballesteros Monrreal, Manuel Gerardo, Méndez Pfeiffer, Pablo Alan, De la Rosa López, Rafael, Lugo Sepúlveda, Ramón Efraín, Enciso Martínez, Yéssica. Aislamiento de uropatógenos bacterianos en gestantes, su identificación y antibiograma mediante el equipo Microscan Autoscan-4. INVURNUS; 10(2) (Julio-Diciembre 2015):14-18.

Turnidge J, Bell J, Biedenbach DJ, Jones RN. Pathogen occurrence and antimicrobial resistance trends among urinary tract infection isolates in the Asia-Western pacific region: report form the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program, 1998-1999. Int J Antimicrob Agents 2002;20:10-17.

Goldmann DA, Huskins WC. Control of nosocomial antimicrobial-resistant bacteria: a strategy priority for hospitals worldwide. Clin Infect Dis 1997; 24 (suppl 1):S139-S145.

Oplustil CP, Nunes R, Mendes C, RESISTNET Group. Multicenter evaluation of resistance patterns of Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Salmonella sppand Shigella spp isolated from clinical specimens in Brazil. RESISTNET Surveillance Program.Braz J Infect Dis 2001;5:8-12.

Patton JP, Nash DB, Abrutyn E. Urinary tract infection: economic considerations. Med Clin N Am. 1991;75: 495-513.

Stamm WE, Hooton TM. Management of urinary tract infections in adults. N Engl J Med. 2000;61(3):713-721.

Ho PL, Wong RC, Chow KH, Que TL. Distribution of integron-associated trimethoprim-sulfamethoxazole resistance determinants among Escherichia coli from humans and food-producing animals. Lett Appl Microbiol. 2009; 49: 627-34.

Infante B, Grape M, Larsson M, Kristiansson C, PallecchiL, Rossolini GM, et al. Acquired sulphonamide resistance genes in faecal Escherichia coli from healthy children in Bolivia and Peru. Int J Antimicrob Agents.2005; 25: 308-12.

Dahmen S, Mansour W, Boujaafar N, Arlet G, Bouallegue O.Distribution of cotrimoxazole resistance genes associated with class 1 integrons in clinical isolates of Enterobacteriaceae in a university hospital in Tunisia. Microb Drug Resist. 2010; 16: 43 -7.

Bailey JK, Pinyon JL, Anantham S, Hall RM.Commensal Escherichia coli of healthy humans: a reservoir for antibiotic-resistance determinants. J Med Microbiol.2010; 59:1331-9.

Andreu A, Alós JI ,Gobernado M ,Marco F , de la Rosa M , García-Rodríguez JA. Etiology and antimicrobial susceptibility among uropathogens causing community-acquired lower urinary tract infections: a nation wide surveillance study. Enferm Infec Microbiol Clin. 2005 Jan; 23 (1): 4-9.

Pallecchi L, Bartoloni A, Fiorelli C, Mantella A, Di Maggio T, Gamboa H, et al. Rapid dissemination and diversity of CTX-M extended-spectrum beta-lactamase genes in commensal Escherichia coli isolates from healthy children from low-resource settings in Latin America. Antimicrob Agents Chemother.2007; 51: 2720-5.

Lautenbach E, Metlay JP, Mao X, Han X, Fishman NO, Bilker WB. The prevalence of fluoroquinolone resistance mechanisms in colonizing Escherichia coli isolates recovered from hospitalized patients. Clin Infect Dis. 2010;51:2805.

Vakulenko SB, Mobashery S. Versatility of aminoglycosides and prospects for their future. ClinMicrobiol Rev. 2003; 16: 430–50.