Perfil de susceptibilidad a anti fúngicos de aislados de Candida spp por el método de microdilución. Nuevos puntos de cortes para fluconazol
Palabras clave:
—Resumen
Las infecciones por levaduras tienen gran importancia debido a su alta frecuencia e incremento de la resistencia a los antifúngicos, especialmente a los derivados azólicos y, en particular, al fluconazol. El objetivo del estudio fue determinar la concentración inhibitoria mínima (CIM) del fluconazol y anfotericina B de aislados de Candida de pacientes ambulatorios y hospitalizados en Paraguay de mayo del 2010 a agosto del 2011, aplicando criterios nuevos y antiguos para el fluconazol. La CIM se determinó por el método de microdilución según la CLSI. Fueron incluidos 50 aislados de Candida, resultando predominante C. albicans (40%) seguido de C. parapsilosis y C. glabrata en igual proporción (20%), C. tropicales (16%) y C. krusei (4%). Con el antiguo criterio, cinco aislados resultaron resistentes al fluconazol (10%), dos fueron C. krusei con resistencia natural, dos C. tropicalis y uno C. albicans. Tres aislados tuvieron sensibilidad dosis dependiente (SDD), uno de cada especie de C. tropicales, C. parasilopsis y C. glabrata. Con el nuevo criterio, la resistencia aumentó a siete aislados (14%), dos de los cuales fueron clasificados previamente como SDD. Los nueve aislados de C. glabrata y dos de C. albicans de sensibles pasaron a SDD. Todos resultaron sensibles a anfotericina B. Con los nuevos puntos de corte hubo una variación importante en el perfil de sensibilidad, especialmente de C. glabrata, que apoya la necesidad de identificar especies, mantener una vigilancia constante de la resistencia a los anti fúngicos y correlacionar los resultados de sensibilidad con las respuestas clínicas al tratamiento.
Descargas
Referencias
Rodero L, Davel G, Soria M, Vivot W, Córdoba S, Canteros CR et al. Estudio multicéntrico de fungemias por levaduras en la República Argentina. Rev Arg Microbiol 2005;37:189-95.
Galván B, Mariscal F. Epidemiología de la candidemia en UCI. Rev Iberoam Micol 2006;23:12-5.
Pfaller MA. Antifungal susceptibility testing methods. Curr Drug Targets 2005;6:929-43.
Carrillo Muñoz A, Abarca L, Quindós G. Métodos colorimétricos para la determinación de la sensibilidad in vitro a los antifúngicos Rev Iberom Micol 2001; 18: 150-5
Clinical and Laboratory Standards Institute. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of yeasts. Approved standard. Document M27-A3. 3rd ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2008.
Rodriguez-Tudela JL, Arendrup MC, Barchiesi F, Bille J, Chryssanthou E, Cuenca-Estrella M, et al. EUCAST definitive document EDef7.1: method for the determination of broth dilution MICs of antifungal agents for fermentative yeasts. Clin Microbiol Infect 2008; 14:398-405.
Pfaller MA, Andes D, Diekema DJ, Espinel-Ingroff A, Sheehan D. Wild-type MIC distributions, epidemiological cutoff values and species-specific clinical breakpoints for fluconazole and Candida: time for harmonization of CLSI and EUCAST broth microdilution methods. Drug Resist Updat 2010; 13:180-95.
Pfaller MA, Andes D, Diekema. Progress in Antifungal Susceptibility Testing of Candida spp. by Use of Clinical and Laboratory Standards Institute Broth Microdilution Methods, 2010 to 2012. J. Clin. Microbiol 2012; 50 (9):2846-56
Nucci M. Epidemiology of Candidemia in Latin America: A Laboratory-Based Survey. 2013 PLoS ONE 8(3):e59373.
Pfaller MA, Jones RN, Doern GV, Sader HS, Messer SA, Houston A et al, and The Sentry Participant Group. Bloodstream infections due to Candida species: SENTRY Antimocrobial Surveillance Program in North America and Latin America, 1997-1998. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44:747-51.
Lopez Morala. Fungemias en hospitales de la Ciudad de Buenos Aires, Argentina. Red de Micología de la Ciudad de Buenos Aires. Rev Iberoam Micol. 2012;29(3):144–49.
Pemán J, Cantón E, Miñana JJ, Florez JA, Echeverria J, Ortega DN, et al. Variación de la epidemiología de las fungemias y de la sensibilidad al fluconazol de los aislamientos de hemocultivos en los últimos 10 años en España: resultados del estudio FUNGEMYCA. Rev Iberoam Micol 2011; 28:91-9.
Almirante B, Cuenca-Estrella M. Candidemia: impacto de los estudios epidemiológicos en la terapéutica y en el pronóstico de una infección grave. Enferm Infecc Microbiol Clin 2011; 29:325-7.
Sanabria R, Samudio M, Fariña N, Laspina F, Ortellado de Canese J, Arbizu Ledesma G, et al. Identificación de especies de candida aisladas de pacientes ambulatorios, hospitalizados, e inmunocomprometidos en Paraguay. Mem. Inst. Investig. Cienc. Salud 2006; 2(2):45-9.
Sanglard D. Clinical relevance of mechanisms of antifungal drug resistance in yeasts. Enferm Infecc Microbiol Clin 2002;20(9):462-70.
Samra Z, Yardeni M, Peled N, Bishara J. Species distribution and antifungal susceptibility of Candida bloodstream isolates in a tertiary medical center in Israel. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2005; 24: 592-5.
Alvarado D, Diaz M, Silva V. Identificación y susceptibilidad antifungica de Candida spp aisladas de micosis invasora. Influencia del porcentaje de inhibición del crecimiento para la determinación del CIM. Rev Med Chile 2002; 130-6.
García L, García P, Marín P, Rodríguez M. Sensibilidad a Fluconazol de levaduras de interés clínico: nuevos puntos de corte. Rev Esp Quimioter 2012;25(4) 266-68.
Maertens JA. History of the development of azole derivatives. Clin Microbiol Infect 2004; 10 (Suppl. 1):1-10.
Barberán J, Mensa J, Fariñas C, Linares P, Serrano R, Menéndez R, et al. Recomendaciones de tratamiento antifúngico en pacientes con bajo grado de inmunodepresión. Rev Esp Quimioter 2008; 21:127-42.
Odds FC. Resistance of yeasts to azole: derivative antifungals. J Antimicrob Chemother 1993; 39:1696-9.
Loeffler J, Stevens D. Antifungal Drug Resistance. CID 2003:36 (Suppl 1) S31.
Porte L, León P, Gárate C, Guzmán AM, Labarca J, García P. Susceptibilidad a azoles y anfotericina B de aislados de Candida spp. Experiencia de una red de salud universitaria, entre 2004 y 2010 Rev Chil Infect 2012; 29 (2): 149-55.
Torres N, Alvarez C, Rondón M. Evaluación mediante tres técnicas de susceptibilidad a fluconazol en especies de Candida aisladas en pacientes con infecciones invasoras. Bogotá-Colombia. Rev Chil Infect 2009;26 (2): 135-43
Muriel MA, Viscaino MJ Bilbao R, et al. Identificación de levaduras y sensibilidad in vitro a diversos antifúngicos Enferm Infecc Microbiol Clin 2000; 18: 120-4.
Sabatelli F, Patel R, Mann PA, Mendrick CA, Norris CC, Hare R, et al. In vitro activities of posaconazole, fluconazole, itraconazole, voriconazole, and amphotericin B against a large collection of clinically important molds and yeasts. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50 (6): 2009-15.
Johnson EM. Issues in antifungal susceptibility testing. J.Antimicrobial. Chemother 2008; 61 Suppl 1:113.8.
Fernández Andreu C, Martínez Machín G, Illnait Zaragozí M, Perurena Lancha M, Águila Sánchez, Brito Galloso M. Sensibilidad in vitro de cepas de Candida frente a fluconazol y anfotericina B. Rev Cub Med Trop 2007;59(2):113-8.
Kuriyama T, Williams DW, Bagg J, Coulter WA, Reedy D, Lewis MAO. In vitro susceptibility of oral Candida to seven antifungal agents. Oral Microbiol Immunol 2005; 20:349-53.
