Ciencias Agrícolas y Veterinarias

10.57201/ieuna2323937

Sección

Fe de erratas

*Autores correspondientes:

aya@biosyntech.com.py, carolina@biosyntech.com.py

Editor de área:

Andrea Arrúa, Universidad Nacional de Asunción.

Editor invitado:

Guillermo Enciso, Centro de Desarrollo e Innovación Tecnológica (CEDIT)

Recibido:

28 de abril de 2023

Aceptado:

19 de junio de 2023

Recibido en versión modificada:

19 de junio de 2023

Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una Licencia Creative  Commons “CC BY 4.0”.

Declaración de conflicto: Los autores declaran no tener conflicto de interes.

e-ISSN 2709 -0817

Como citar: Zaracho Paniagua, N. D., Maluff Ladan, Y., Talavera Stefani, L. N., Sapper Lacy, Y. D., Prendeski Storaluk, C. E. y Nishii Encina, E. A. (2023). Fe de erratas de “Glaesserella parasuis: serotipos y virulencia de cepas aisladas de cerdos en Itapúa-Paraguay entre febrero del 2022 a marzo del 2023”. .Revista investigaciones y estudios. – UNA, 14 (2), 74.

DOI del artículo original: 10.57201/ieuna2313373

Fe de erratas de “Glaesserella parasuis: serotipos y virulencia de cepas aisladas de cerdos en Itapúa-Paraguay entre febrero del 2022 a marzo del 2023”

Erratum to “Glaesserella parasuis: serotypes and virulence of strains isolated from pigs in Itapúa-Paraguay between February 2022 and March 2023”

Nadia Denisse Zaracho Paniagua^1*,Yasmine Maluff Ladan¹, Liliana Noelia Talavera Stefani^1,2, Yanina Dionisia Sapper Lacy¹, Carolina Elizabeth Prendeski Storaluk^1*, Eliane Aya Nishii Encina^1*

¹Biosyntech S. A. Área de Investigación y desarrollo e Innovación. Fram-Paraguay.

²Universidad Nacional de Itapúa. Facultad de Ciencias y Tecnología. Itapúa-Paraguay.

Los autores se disculpan sinceramente por el error involuntario en la composición tipográfica en la página 87, sección Materiales y Métodos.

El contenido completo de dicha sección debe ser el siguiente la inclusión se visualiza en negrita:

Tipificación molecular y virulencia. Para realizar la tipificación molecular se utilizaron los cebadores descritos por Howell (2015), con modificaciones hechas por Lacouture et al. (2017). Fueron utilizadas tres mezclas de cebadores que se detallan a continuación: PM1: funB (Ser1), glyC (Ser3), wciP (Ser4), funQ (Ser7), funAB (Ser14); PM2: wzx (Ser2), funV (Ser9), gltP (Ser13), funI (Ser15) y PM3: wcwK (Ser5/12), gltI (Ser6), scdA (Ser8), funX (Ser10), amtA (Ser11). Cada reacción de PCR consistió en 12,5 μL de 2x GoTaq® G2 Colorless Master Mix (Promega); 1 mM de cada uno de los cebadores, csp de agua libre de nucleasas y 2 μL de ADN extraído, con un volumen final de 25 µL. Las condiciones de ciclado fueron las mismas descritas por Lacouture et al., (2017). Para identificar la presencia de genes relacionados a virulencia se utilizó la metodología descrita por Galofré-Mila et al., (2017) para la amplificación de genes de virulencia vtaA.