Efecto de la concentración del hipoclorito de sodio sobre la contaminación y oxidación de meristemas en la micropropagación de banano
DOI:
https://doi.org/10.18004/rcfacen.2023.14.2.156%20Palabras clave:
Cultivo in vitro, contaminación, desinfección, establecimiento, propagaciónResumen
El experimento se realizó en el Laboratorio de Biotecnología de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de Asunción, con el objetivo de evaluar dos tratamientos de desinfección de explantes para la micropropagación del banano (Musa spp.) variedad Nanicao. Se utilizaron 80 hijuelos de 30 - 40 cm de los cuales se extrajeron los ápices meristemáticos que fueron sembrados en medios MS (Murashige y Skoog 1962) con el agregado de 1 g.l-1 de carbón activado como antioxidante. Los tratamientos consistieron en dos concentraciones de NaClO (5 y 10 %) durante cinco minutos. El diseño experimental utilizado fue completamente al azar. Las variables evaluadas fueron: porcentaje de supervivencia, grado de oxidación y porcentaje de contaminación de plántulas. Los datos obtenidos fueron sometidos al análisis de varianza al 5 % de probabilidad de error. No se registraron diferencias significativas entre los tratamientos de desinfección aplicados relacionados a la sobrevivencia de explantes de banano cultivados in vitro, aunque existieron diferencias significativas con respecto al grado de oxidación y contaminación microbiana. Se logró una regeneración de 12,5% de los segmentos nodales de banano sembrados. En conclusión, al incrementar la concentración de hipoclorito de sodio, el porcentaje de explantes contaminados con hongos y bacterias fue menor, sin embargo, esto se tradujo en un incremento del grado de oxidación de explantes de Musa spp variedad Nanicao.
Referencias
Abdelnour, A., Aguilar, M & Valverde, L. (2011). Micropropagación de Pilón (Hieronyma alchorneoides). Agronomía Costarricense, 35(2): 9–19.
Aguilera Arango, G.A., Puentes Díaz, C.L. & Rodríguez Henao, E. (2021). Métodos de desinfección para el establecimiento in vitro de dos variedades de yuca para uso agroindustrial. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales, 8(3): 21–30.
Alvarenga, V., Abdelnour, E. & Villalobos, A. (2007). Conservación in vitro de chayote (Sechium edule). Agronomía Mesoamericana, 18(1): 65–73.
Alves, M.R., Rodrigues, M.D., de Oliveira, A. & da Rocha, F. (2010). In vitro establishment and callogenesis in shoot tips of Peach Palm. Revista Caatinga, 23(1): 40–44.
Arbeláez, L.M.A., Montoya, J.L. & Saavedra, S.A.R. (2016). Evaluación de protocolos para el establecimiento y desinfección in vitro de meristemos de plátano Musa spp. Vitae, 23(Supl. 1): 391–395.
Borges, M., Ros, C., Castellanos, C. & Velásquez, R. (2004). Efecto de diferente métodos de desinfección en el establecimiento in vitro de Guadua angustifolia Kunth. Biotecnología Vegetal, 4(4): 237–242.
Borges, M., Estrada, E., Pérez, I. & Meneses, S. (2009). Uso de distintos tratamientos de desinfección en el cultivo in vitro de Dioscorea alata L. clon caraqueño. Revista Colombiana de Biotecnología, 11(2): 127–135.
Castro, D., Jiménez, C., Ríos, D., Restrepo, A. & Giraldo, C. (1993). Utilización de las técnicas de cultivo de tejidos vegetales in vitro para la propagación y conservación de germoplasma de cuatro especies vegetales en vías de extinción en el oriente antioqueño: Comino (Aniba perutilis), Abarco (Cariniana pyriforme) y Guayacán (Tabebuia serratifoliar). Documento Divulgativo del CONARE, 8: 1–44.
Cejas, I., Capote, I., Aragón, C., Escalona, M., Pino, C., González, J., Rodríguez, R., Noceda, C., Cañal, M.D.J., Sandoval, J., Roels, S. & Debergh, P. (2011). Optimización del protocolo de propagación del plátano cv. CEMSA ¾ en Biorreactores de Inmersión Temporal. Agrociencia Uruguay, 15(1): 13–18.
Del Ángel, O., Gilber, A., Gómez, M. & García, H. (2014.) Desinfección y regeneración eficiente de chayote in vitro (Sechium edule Jacq. Sw.). Pp. 23–32 in Ramos, M., & Aguilera, V. (Eds.). Congreso Interdisciplinario de Cuerpos Académicos: Ciencias Agropecuarias, Handbook T-II. Valle de Santiago: ECORFAN. x + 240 pp.
Díaz Lezcano, M.I., Flor Benítez, B.A., Enciso Garay, C.R. & González Segnana, L.R. (2016). El carbón activado y las condiciones de oscuridad en la micropropagación de banana variedad Nanicão. Revista Colombiana de Biotecnología, 18(2): 140–146.
Díaz Lezcano, M.I., Pereira Báez, K.D., Benítez Vera, S.G., Brítez Moreira, J.R., Alegre, C.E., Duarte Ovejero, N.N., Mongelós Franco, J.Y., Mussi Cataldi, C.E. & Batte Martínez, H.D. (2021). Identificación de agentes causales de la contaminación microbiana durante la micropropagación de Musa spp. Steviana, 13(2), 21–29.
Díaz Lezcano, M.I., Quiroz, M.I., Espínola, V., Britos, M.J. & Romero, J.A. (2023). Tiempo de inmersión en hipoclorito de sodio en la desinfección de meristemas de banano para su propagación clonal. Revista de Investigación Científica y Tecnológica, 7 (1): 131–139.
Drew, R.A. & Smith, M.K. (1990). Field evaluation of tissue-cultured bananas in south-eastern
Queensland. Australian Journal of Experimental Agriculture, 30(4): 569–574.
FAO [Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura]. 2017. Situación del mercado del banano 2015-16. Roma: Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura. iv + 10 pp. [Consulted: 26.v.2018]. <https://www.fao.org/3/i7410s/i7410s.pdf>.
FAO [Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura]. (2022). Banano. Análisis del mercado 2021. Roma: Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura. vi + 14 pp. [Consulted: 26.vii.2022]. <https://www.fao.org/3/cc1610es/cc1610es.pdf>.
Fajardo, L. (2006). Establecimiento in vitro de yemas axilares de Guada angustifolia Kunth. (Tesis de Maestría). Santa Clara: Universidad Central "Marta Abreu" de Las Villas. 80 pp. French, E. & Hebert, T. (1980). Métodos de investigación fitopatológica. San José: Instituto Interamericano de Ciencias Agricolas. 289 pp.
García, D., Mesa, N., & Ocampo, M. (2015). Estandarización del protocolo de desinfección para la micropropagación de Aspidosperma polyneuron (en línea). Revista Colombiana de Biotecnología, 2(17): 75–84.
García, N., Giraldo, D. & Castro-Ríos, K. (2016). Eficiencia de tratamientos para el control de
hongos competidores, durante la producción comercial de Pleurotus spp. @limentech: Ciencia y Tecnología Alimentaria, 14(1): 27-37.
Hernández, Y., & González, M.E. (2010). Efectos de la contaminación microbiana y oxidación fenólica en el establecimiento in vitro de frutales perennes. Cultivos Tropicales, 31(4): 1–19.
Laynez Garsaball, J.A., & Sánchez Cuevas, M.C. (2006). Desinfección de ápices de yuca (Manihot esculenta Crantz) cv. ‘Querepa Rosada’ con hipoclorito de sodio. Revista Científica UDO Agrícola, 6(1): 60–66.
López Gómez, P., Iracheta Donjuan, L., Castellanos Juárez, M., Méndez López, I., Aguirre Medina, J.F., Gutiérrez Díez, A., Ojeda Zacarías, M.C. & Pérez Pérez, B.R. (2011). Variación en la tolerancia a desinfectantes de genotipos élite de Coffea spp. cultivados in vitro. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 2(5): 645–657.
Marulanda, M., Gutiérrez, L., Uribe, M. & Márquez, M. (2005). Micropropagación de Guadua angustifolia (en línea). Actualidades Biológicas, 27(82): 5–15.
Muñoz Castellanos, L.N., Borrego Loya, A., Villalba Bejarano, C.V., González Escobedo, R., Orduño Cruz, N., Villezcas Villegas, G.P., Rodríguez Roque, M.J., Avila Quezada, G.D. & Vargas Arispuro, I. (2021). El cloro y su importancia en la inactivación de bacterias, ¿Puede inactivar virus? Revista Mexicana de Fitopatología, 39(Especial): 198–206.
Bogado, F.A., Vera Bravo, C., Ayala, P.G., Sansberro, P.A. & Luna, C.V. (2015). Uso de distintos desinfectantes superficiales para el establecimiento in vitro de segmentos nodales de Grevillea robusta. Ciencias Agronómicas, 16(27): 11–16.
Menegazzo, R.F., Rickli, M.E., Menegazzo, A.W., Lopes, A.D., Manfio, C.E. & Koefender, J. (2019). In vitro multiplication of cassava varieties. Arquivos de Ciências Veterinárias e Zoologia da UNIPAR, 22(4): 101–107.
Mongelós Franco, Y., Mussi Cataldi, C.E., Duarte Ovejero, N.N. & Díaz Lezcano, M.I. (2020). Protocolo de desinfección para establecimiento in vitro de meristema apical de banano Musa spp. CEDAMAZ, 10(2): 47–50.
Montano, N., Reynaldo, D., López, J., Torres, M., Otero, E., Gutiérrez, V. & Martínez, M. (2004). Nueva metodología para la implantación in vitro del plátano y el banano en biofábricas. Pp. 2–8, in XVI Forum de Ciencia y Técnica Municipal. Santo Domingo, Villa Clara. Murashige, T., & Skoog, F.A. (1962). Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiologia Plantarum, 15(3): 473–497.
Owoseni, M.C., & Okoh, A.I. (2017). Assessment of chlorine tolerance profile of Citrobacter species recovered from wastewater treatment plants in Eastern Cape, South Africa. Environmental Monitoring and Assessment, 189(4)201: 1–12.
Zoffoli, J.P., Latorre, B.A., Daire, N. & Viertel, S. (2005). Effectiveness of chlorine dioxide as influenced by concentration, pH, and exposure time on spore germination of Botrytis cinerea, Penicillium expansum and Rhizopus stolonifer. Ciencia e Investigacion Agraria, 32(3): 142–148.
Pereira, J.E.S., Mattos, M.L. & Fortes, G.R. (2003). Identificação e controle com antibióticos de
bactérias endofíticas contaminantes em explantes de batata micropropagados. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 38(7): 827–834.
Pérez Pascual D., Jiménez Guillén D., Ramos Jiménez S., Zúñiga Aguilar J. & Monroy Hernández R. (2023). Características de frutos, semillas y crecimiento de cedro de plantaciones de cacao, en la Chontalpa, Tabasco. Pp. 12–18, in Sánchez Gutiérrez, F. Monroy Hernández, R. Sol Sánchez, A. Guevara Hernández, F. Medina Meléndez, J.A. Bautista Gálvez, A. Ávalos Lázaro, A.A. & Gerónimo Torres, J.C. (Eds.). Aplicaciones del conocimiento científico agropecuario, forestal y acuícola con enfoque sustentable: aportaciones desde el Sur-Sureste mexicano. Tuxtla Gutiérrez: Universidad Autónoma de Chiapas. 239 pp.
Ramírez, M., Urdaneta, A. & León, S. (2002). Establecimiento In vitro de explantes adultos del guanábano (Annona muricata L.) tratados con hipoclorito de sodio. Revista de La Facultad de Agronomía, 19(1): 48–55.
Ramírez, L., Granados, J. & Carreño, N. (2014). Evaluación del efecto de tratamientos de desinfección con hipoclorito de sodio sobre segmentos nodales de Guadua angustifolia Kunth para el establecimiento del cultivo in vitro. Revista de Investigación Agraria y Ambiental, 5(1): 155–169.
Angarita, A. & Perea, M. (1991). Micropropagación de Plátanos y Bananos. Pp. 495–512, in
Roca, W.M., Mroginski, L.A. (Eds.). Cultivo de tejidos en la agricultura: fundamentos y aplicaciones. Cali: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Publicación CIAT, 151: 969 pp.
Sánchez, F., Taketoshi, A., Arroniz, S., Gómez, A. & Gómez, L. (2009). Comparación de la acción bactericida de hipoclorito de sodio y Microcyn 60. Revista Odontológica Mexicana, 13(1): 9-16
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